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【Q&A】土壤与粪便样本:为什么DNA提取如此困难?
在环境微生物组的研究中,我们往往需要提取粪便或土壤样本中的核酸做分析。但是粪便或土壤样本组分包含复杂的无机物、有机物及微生物。除了成分复杂外,粪便或土壤中的腐殖质还会抑制PCR扩增反应,以及限制性酶切,对后续的实验造成影响。因此,从粪便或土壤中提取核酸相比于从组织、细胞中提取更加复杂。
在实验时,总会遇到以下这些情况:
● 提取的DNA得率低。
● 提取的核酸出现降解,跑胶有弥散现象。
● 提取DNA的纯度过低,残留抑制物影响下游实验。
为什么土壤和粪便样本
DNA提取如此困难
土壤和粪便样本的DNA提取之所以困难,主要由于以下多方面的复杂因素:
01.样本复杂性高
基质干扰物质多:粪便和土壤中含有大量抑制物,如腐殖酸、多酚、多糖、脂类、金属离子等,这些物质会干扰酶反应(如PCR),降低提取效率。
异源性:样本中可能混合宿主DNA(如人类或动物细胞)、微生物DNA(细菌、病毒等)以及环境DNA(植物残骸、寄生虫等),宿主DNA与微生物DNA共存时可能因理化性质差异(如片段长度、GC含量)影响提取效率。比如通常情况下提取粪便或土壤中的微生物DNA,用来分析微生物菌群之间的相互关系,样本中的宿主DNA(如肠道上皮细胞DNA)占比通常较高,导致测序数据中微生物序列比例显著降低。
02.细胞壁结构差异
03.DNA降解风险
环境核酸酶:土壤和粪便中含有大量核酸酶(如DNase),可能在样本采集前就已降解DNA。
土壤中的革兰氏阳性菌以及真菌等因为其细胞壁比较厚,都属于比较难裂解的微生物。另外一些比较特殊的土壤样本,如沙土,其中的菌结构更为复杂,更难裂解。
使用磁珠法核酸提取试剂,产品中含有的研磨珠可以有效针对不同类型的微生物,尤其是对革兰氏阳性菌和真菌都能做到有效破碎,尽可能多的获得土壤中的微生物信息。
由于粪便样本中可能含有多种可溶性杂质,如胆红素、胆汁盐、腐殖酸、植物源性多糖等。对于成分复杂的粪便样本,倘若不进行预洗,这些杂质会在细胞及菌体裂解后,混合在释放的核酸中,并与核酸竞争结合磁珠,杂质与磁珠结合后,在洗脱时与磁珠分离,导致洗脱的DNA有颜色,纯度低。
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样本微生物含量低:
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裂解不充分:增加物理破碎的时间和次数。 -
乙醇:检查洗涤液中是否加入乙醇。 -
洗脱不充分:建议二次洗脱增加产量或提高洗脱体积。
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检测DNA的浓度:DNA浓度太低。 -
样本DNA稀释之后可以扩增:样本中的腐殖酸等抑制物含量高。 -
确定PCR反应条件是否已优化:退火温度、时间、引物等等。 -
非特异条带:洗脱液中目的DNA的丰度可能比较低。如果样品中的目的微生物含有比较厚的细胞壁,可能需要额外的破碎裂解。
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在洗涤步骤之前,用异硫氰酸胍溶液洗涤:使用4.5M-5.5M的异硫氰酸胍溶液洗涤1-2次,有助于去除腐殖酸等杂质,从而改善DNA的颜色。
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减少样本用量:如果样本中腐殖酸等杂质含量较高,适当减少样本用量,可以降低杂质的相对含量,使洗脱的DNA颜色更接近正常。
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蛋白去除不干净:增加蛋白沉淀离心的次数。 -
洗涤不干净:增加洗涤次数。
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RNA含量高:可在洗脱之后的溶液中加入RNase消化。
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蛋白去除不干净:增加蛋白沉淀离心的次数。 -
杂质去除不干净:在核酸洗脱时,使用高质量的洗脱液,如无核酸酶的水或低盐缓冲液。确保洗脱液的体积和温度合适,以提高核酸的洗脱效率,减少杂质残留。
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优化裂解条件:避免过度裂解,降低物理破碎的力度。 -
DNase污染:操作过程中是否有污染DNase,造成DNA降解。 -
样品用量太多:杂质和腐殖酸含量过高的样品,可使得当降低样品的用量。 -
样品中含有二价金属离子:可在裂解液中加入EDTA。
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增加样本量:如果样本微生物含量低,可以增加样本量。 -
优化裂解条件:确保裂解充分,避免过度裂解,降低物理破碎的力度。如果提取的DNA出现降解,可能是裂解条件不当或操作过程中有污染,可以加入RNase I 来去除RNA污染。 -
选择合适的去杂剂:对于含有高有机质的样本,选择具有去除蛋白、腐殖酸等复杂抑制物的去杂剂;如果乙醇等没有充分挥发,需要充分晾晒使醇类充分挥发。 -
使用高效的提取试剂盒:使用高性能的提取试剂盒,如凡知医学土壤DNA提取试剂盒和粪便DNA提取试剂盒,可以有效去除样本中的腐殖酸、重金属离子等杂质,高效获得高纯度的DNA。





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